De la Cruz et al
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Revista Amazónica Ciencia y Tecnología Volumen 3 Nº 3
Introducción
La Vainilla (Vanilla sp) es una
orquídea distribuida mundialmente en
regiones tropicales, originaria de los
bosques de: Meso América, parte
norte de Sur América y Tahití; como la
mayoría de las orquídeas, necesita de
sombra para su desarrollo normal; la
regulación de sombra, es una práctica
determinante para el adecuado desa-
rrollo del cultivo, especialmente
cuando la planta es pequeña (Olivares,
2010).
La vainilla se desarrolla
perfectamente en armonía con los
recursos forestales, debido a que
aparte de la sombra, requiere de árbo-
les como tutores, utilizándoles de
sostén y a la vez aprovechan el aporte
de materia orgánica (Hernández,
2011).
Esta planta posee raíces
adventicias, que poseen pelos absor-
bentes, condición para considerarla
una gran consumidora de agua, las
raíces crecen de manera superficial en
el suelo sobre la materia orgánica y no
Introduction
Vanilla (Vanilla sp) is an
orchid native to the forests of Meso
America, northern South America and
Tahiti and distributed worldwide from
tropical regions. As most orchids need
shade for normal development, shade
regulation is a determining factor for
the development of proper cultivation
practice, especially when the plant is
small (Olivares, 2010).
Vanilla develops perfectly in
harmony with the forest resources,
where trees provide shade and also
serve as tutors, supporting vanilla and
contributing organic matter
(Hernández, 2011). This plant has
adventitious roots, which have root
hairs, making it a major consumer of
water, surface roots grow on organic
matter and not very deeply into the soil
(León, 1987).
The climbing stem presents
radical tendrils with which it binds to
son profundas (León, 1987). El tallo es
trepador, presenta zarcillos radicales,
con los cuales se fija sobre otros árbo-
les. Posee yemas, de las cuales brotan
hojas e inflorescencias, una por yema
respectivamente (Cordero, 1986). Las
hojas son enteras, planas, ovales,
oblongas y terminadas en punta, son
alternas paralelinervadas, gruesas y
cerosas de 15 a18 cm de largo y de 5 a
7 cm de ancho (León, 1987 y Luelmo,
1987).
Para la producción comercial,
se cultivan solamente tres: Vanilla
planifolia (Jacks. ex Andrews), Vanilla
tahitensis (Moore) y Vanilla pompona
(Curti) (Curti, 1995). Además de las
especies seleccionadas, Soto (2006),
indica la existencia de otras especies
aromáticas que se cultivan en Brasil,
aunque no tienen un alto valor econó-
mico, tal es el caso de Vanilla chami-
sonis (Klotzsch), entre otras.
La propagación sexual es
difícil bajo condiciones naturales,
pues los órganos sexuales de la flor
están separados por una membrana
llamada róstelo que impide la polini-
zación natural y para la obtención de
plántulas completas en invernadero se
tardaría un promedio de 440 días,
(Parra, 1984 citado por Alatorre,
2002), por este y otros motivos la
propagación de la vainilla es asexual
con esquejes de tallos. Según Nieto
(2010), para la selección de esquejes,
se emplearán guías nuevas pero duras,
cuyo tallo tenga al menos un cm de
diámetro, y que aún no ha producido
flor.
El uso de reguladores de creci-
miento para enraizamiento es escaso,
pero, en base a los resultados obteni-
dos en diversas investigaciones con
otras especies vegetales, éstos podrían
aumentar el desarrollo de las plantas
estimulando una rápida emisión de
raíces y una mayor cantidad de brotes
laterales, rompiendo así, el hábito
monopódico de las especies de este
género. En 1935, Went y Kenneth
demostraron que el ácido indol acético
(AIA) estimula la iniciación de raíces
en cortes de tallo; la auxina sintética
ácido α - Naftalenacético (ANA) por
lo general es más eficaz que el AIA
(Westwood, 1982).
Mucho son los ejemplos de
enraizamiento exitoso utilizando ácido
naftalenacético, tal es el caso de Hype-
ricum sp, especie que arrojó los
siguientes resultados en las siguientes
variables: porcentaje de prendimiento
98,15 %, porcentaje de enraizamiento
de 63,66 % a los 59 días y longitud de
raíz 4,38 cm a los 61 días (Lema,
2011). También, en un estudio similar
realizado por Noboa (2010) en Vacci-
nium floribundum (Kunth) utilizando
una dosis alta de ANA (1g/cm3) con
diferentes sustratos obtuvo resultados
para porcentaje de prendimiento entre
4,4 y 20 % a los 90 días hasta 86,7 % a
los 150 días; número de brotes por
estaca desde 0,7 a 1,9 a los 90 días,
hasta 2,7 a los 150 días y una longitud
de brote entre 0,2 y 0,8 cm hasta 1,2
cm a los 150 días.
En Pastaza la producción agrí-
cola es limitada ya que los habitantes
del sector rural que en su mayoría son
colonos, se dedican a otras actividades
que complementan a la agricultura
como: la venta de madera y mayorita-
riamente a la ganadería; y son precisa-
mente estas dos actividades las
causantes de la problemática de defo-
restación, ocasionada por la tala indis-
criminada de bosques y por la expan-
sión de la frontera ganadera. Los colo-
nos han abandonado prácticas de culti-
vos tradicionales como lo fue en su
momento la naranjilla.
En vista de estas consideracio-
nes y conociendo la importancia
comercial que tiene a nivel mundial la
vainilla por la alta demanda, y sabien-
do que ciertas especies se desarrollan
de forma natural en los bosques de la
Amazonía; su cultivo se presenta
como una alternativa en la producción
agrícola, debido a su fácil adaptación a
las condiciones climáticas de la zona,
y al no existir suficiente información
documentada de la vainilla en Ecua-
dor, surge como problema científico la
necesidad de conocer, ¿Cómo influye
el uso del ácido α naftalenacético
(ANA) y cinco sustratos en las varia-
bles de crecimiento de la vainilla en
condiciones de vivero.
El objetivo principal de esta
investigación, determinar el efecto de
cinco sustratos y una dosis de ANA en
la propagación de esquejes de vainilla
en condiciones de vivero en el Centro
de Investigación, Postgrado y Conser-
vación de la Biodiversidad
Amazónica-UEA, Santa Clara-Pastaza
Materiales y metodos
Localización y duración del experi-
mento
El ensayo tuvo una duración
de 6 meses y se llevó a cabo en El
Centro de Investigación, Posgrado y
Conservación Amazónica (CIPCA),
situado en la Región Amazónica
Ecuatoriana, en la Provincia de Napo,
Cantón Arosemena Tola, en el km 44
de la vía Puyo – Tena, junto a la
confluencia de los ríos Piatúa y Anzu,
a una altura de 575 m.s.n.m. Latitud
01°18 S y Longitud 77°53 W (De la
A, 2012).
Condiciones meteorológicas
La precipitación media anual es de
4320 mm, con una humedad relativa
del 90% y temperatura media anual de
other trees. It has buds, from which
sprout leaves and inflorescences, one
per yolk respectively (Lamb, 1986).
The leaves are whole, flat, oval,
oblong, pointed, alternate paralel
innervated, thick and waxy, 15 to 18
cm long and 5-7 cm wide (León, 1987
Luelmo, 1987).
For commercial production,
only three are grown: Vanilla planifo-
lia (Jacks ex Andrews.), Vanilla
tahitensis (Moore) and Vanilla pompo-
na (Curti) (Curti, 1995). In addition to
the selected species, Soto (2006), indi-
cates the existence of other aromatic
species grown in Brazil, although they
have a high economic value, as in the
case of Vanilla chamisonis (Klotzsch),
among others.
Sexual propagation is difficult
under natural conditions as sexual
organs of the flower are separated by a
membrane called rostellum preventing
natural pollination and delaying the
appearance of whole seedlings by 440
days on average over greenhouse
conditions, (Parra, 1984 cited by
Alatorre, 2002). For this and other
reasons the spread of vanilla is asexual
with stem cuttings. According to Nieto
(2010), for the selection of cuttings,
new and harder guides with stems of at
least one cm in diameter which has yet
to produce a flower will be used.
The use of rooting growth
regulators is lacking but, based on the
results of various studies with other
plant species, they could increase
plant growth stimulating rapid emis-
sion of roots and a greater number of
side shoots, thus breaking the mono-
podic habit of the species of this
genus. In 1935, Kenneth Went
demonstrated that and indole acetic
acid (IAA) stimulates root initiation
on stem cuttings; synthetic auxin acid
α - Naphthaleneacetic (ANA) is gene-
rally more effective than AIA
(Westwood, 1982).
Many are the examples of
successful rooting using naphthalene
acetic acid, as in the case of Hyperi-
cum sp, a species that yielded the
following results on the following
variables: percentage of seizure
98.15%, percentage rooting 63.66% at
59 days, and root length 4.38 cm at 61
days (Lema, 2011). Also, in a similar
study by Noboa (2010) vaccinium
floribundum (Kunth) using a high
dose of ANA (1g / cm3) with different
substrates obtained results for survival
between 4.4 and 20% at 90 days up to
86.7% at 150 days; number of shoots
per cutting from 0.7 to 1.9 at 90 days,
up to 2.7 at 150 days and a length of
outbreak between 0.2 and 0.8 cm to
1.2 cm at 150 days.
In Pastaza, agricultural
production is limited since the inhabi-
tants of the rural sector are mostly
settlers engaged in other activities that
complement agriculture such as the
sale of wood and products mostly for
livestock; and it is precisely these two
activities, with indiscriminate logging
and the expansion of the cattle frontier,
that are causing the problems of defo-
restation. Settlers have abandoned
traditional crop practices as were prac-
ticed in the naranjilla era.
In view of these considerations
and knowing the commercial impor-
tance and high demand for vanilla
worldwide, and knowing that some
species grow naturally in the forests of
the Amazon; its cultivation presents as
an alternative crop in agricultural
production due to its easy adaptation
to climatic conditions of the area, and
the inexistence of sufficient documen-
ted information on vanilla in Ecuador,
emerges as a scientific problem that
needs to be studied, How does the use
of α naphthaleneacetic acid (NAA)
Figura 1. Unidades experimentales con plantas de vainilla.
and five substrates influence growth
variables in vanilla in nursery condi-
tions?
The main objective of this
research to determine the effect of five
substrates and a dose of ANA in the
propagation of vanilla cuttings in
nursery at the Center for Research,
Graduate Studies and Conservation of
the Amazon-UEA, Santa Clara-
Pastaza Biodiversity.
Materials and methods
Location and duration of the experi-
ment
The trial lasted six months and
was conducted in the Research Center,
Graduate and Amazon Conservation
(CIPCA), located in the Ecuadorian
Amazon region, in Napo Province,
Guangzhou Arosemena Tola, at km 44
of the road Puyo - Tena, near the
confluence of the rivers Piatúa and
Anzu, at a height of 575 m Latitude 01
° 18 'S and longitude 77 ° 53' W (From
the A, 2012).
Meteorological Conditions
The average annual precipita-
tion is 4320 mm, with 90% relative
22°C (UEA, 2012).
Clasificación ecológica
El CIPCA de la UEA se ubica
en una formación ecológica de bosque
muy húmedo Pre-Montano (bmh-PM)
según el sistema de clasificación de
zonas de vida de Holdridge (1982).
Diseño experimental
Se utilizó un diseño de
Bloques Completos al Azar en arreglo
factorial 5x2 con cinco sustratos
(SBS, Sa, TN, SBSTN, SaTN) y la
utilización de una dosis de hormona
(H1) frente al testigo a dosis cero
(H0). La combinación de estos facto-
res dio origen a 10 tratamientos, con 3
repeticiones.
Area Experimental
El experimento se realizó en
condiciones de vivero en un área de
240 m². Luego de la limpieza del área,
se procedió al traslado de material y su
preparación. Para la construcción del
vivero se emplearon vigas de madera
de 2,50 m como pilares, que fueron
apuntalados para evitar que cedan
ante la presión originada por el alam-
bre galvanizado que soporta el sarán.
Posteriormente se procedió a
la nivelación de cada uno de los sitios
humidity y an average annual tempe-
rature of 22°C (UEA, 2012).
Ecological Classification
CIPCA of UEA is located in a
very humid, Pre-Montano (bmh-PM),
ecological forest formation according
to the Holdridge life zones (1982).
Experiment Design
Randomized whole block
design was used factoring a 5x2 arran-
gement with five substrates (SBS, Sa,
TN, SBSTN, SATN) and the use of a
dose of hormone (H1) versus control
at zero dose (H0). The combination of
these factors led to 10 treatments with
3 replications.
Experiment Area
The experiment was perfor-
med under nursery conditions in a 240
m²area. After cleaning the area, we
proceeded to transfer and prepare the
material. To build the nursery, beams
of 2.50 m were used as pillars, which
were shored to prevent yield to the
pressure caused by the galvanized
wire carrying the ceiling.
donde se ubicaron las unidades expe-
rimentales consistentes en cajones
elaborados de tablas de 2 cm de espe-
sor por 20 cm de ancho, con 1 m de
largo por 0,80 m ancho para un área de
0,80 m2 (figura 1).
Obtención y preparación de los sustra-
tos
Sustrato de Bosque Secundario (SBS),
se obtuvo de los primeros 3 cm de la
capa superficial del suelo en bosques
secundarios de la zona.
Sustrato arboriente (Sa), se obtuvo de
los residuos de corteza de madera en
descomposición, provenientes de la
industria de contrachapado Arboriente
S. A. de la ciudad de Puyo, Pastaza.
Sustrato Turba Negra (TN), turba
negra de Sphagnum adquirida de las
casas comerciales.
Collection and preparation of substra-
tes
Secondary Forest Substrates (Sustrato
de Bosque Secundario) (SBS), were
obtained from the first 3 cm of topsoil
in the secondary forests in the área.
Arboriente Substrate (Sustrato arbo-
riente) (Sa), was obtained from deca-
ying wood bark waste from the
plywood inudstry Arboriente SA of
Puyo, Pastaza.
Black Peat Substrate (Sustrato Turba
Negra) (TN), Black Sphagnum peat
acquired from commercial homes.
Obtención y preparación del mate-
rial vegetativo
El material vegetativo fue
recolectado en los cantones Arajuno y
Pastaza. Para la selección de este
material no se siguió un protocolo de
selección específico de longitud,
diámetro y número de yemas, debido a
lo escaso del mismo a nivel de provin-
cia. Los esquejes recolectados fueron
envueltos en papel periódico en
paquetes de 10 esquejes, para prote-
gerlos de daños por insolación y
disminuir los riesgos de contamina-
ción durante el viaje.
En un recipiente se colocaron 25 litros
de agua y se añadió 250 g de ANA,
cantidad equivalente a 0,10 g/cm3,
donde se colocaron 45 esquejes selec-
cionados por un periodo de 13 horas,
siguiendo las indicaciones recomenda-
das por el fabricante de la hormona.
Plantación
Se plantaron 3 esquejes en
hilera en cada unidad experimental,
con una separación de 10 cm de
distancia de los bordes del cajón y 30
Collection and preparation of vege-
tative material
The vegetative material was
gathered from the cantons of Arajuno
and Pastaza. The selection of this
material did not follow a protocol
designating specific length, diameter
and number buds, due to a scarcity
within the province. The collected
cuttings were wrapped in newspaper
in packs of ten to protect them from
sun damage and to reduce the risk of
contamination during the trip.
45 select cuttings were placed in a
25-liter container of water was prepa-
red with 250 g of ANA, equivalent to
0.10 g / cm 3 for a period of 13 hours,
following the directions recommended
by the manufacturer of the hormone.
Planting
3 cuttings were planted in rows
in each experimental unit, spaced 10
cm from the edges of the drawer with
30 cm between plants and buried at a
Then we leveled each of the sites
where the experimental units were
placed in boxes made of boards 2 cm
thick by 20 cm wide, 1 m long and
0.80 m wide for an area of 0.80 m2
(Figure 1).
cm entre plantas, y enterrados a una
profundidad de 10 cm. Por ser la vaini-
lla una planta trepadora se necesitó
colocar tutores, formados por listones
de chonta con una longitud de 2
metros, se dispuso un tutor por cada
unidad experimental.
Momento de la toma de muestras
A los 60 días de plantado se
hicieron las mediciones del prendi-
miento. El Porcentaje de prendimiento
de la Vanilla sp se obtuvo utilizando la
siguiente fórmula:
En donde:
% Pl.P = Porcentaje de plantas
prendidas
# Pl.P = Número de plantas prendidas
# Pl.S = Numero de plantas sembradas
A los 45 y 80 días de plantado
se evaluó el número de plantas con
brote mediante conteo simple.
La longitud de los brotes se
midió a los 45, 60, 80, 100, 120 y 150
días de plantados los esquejes, con
cinta métrica
A los 80, 100, 120 y 150 días
de instalado el experimento se midió
depth of 10 cm. Since vanilla is a
climbing plant, 2 meter-long tutors
were used and a guard was available
for each experimental unit.
Time of sampling
60 days after planting, arrest
measurements were made. The engraf-
tment percentage of the vanilla was
obtained using the following formula:
In which:
% Pl.P = Percentage of plants pinned
# Pl.P = Number of plants pinned
# Pl.S = Number of plants sowed
The planting was evaluated at
45 days and 80 days for the number of
plants with buds using a simple coun-
ting method.
The bud length was measured
with metric tape at 45, 60, 80, 100, 120
and 150 days.
At 80, 100, 120 and 150 days,
diameter measures were taken of
emerging leaves with a caliper
The number of leaves was
registered by direct count at 60, 80,
el diámetro de los brotes por encima
de la segunda hoja del brote con un
calibrador.
El número de hojas fue regis-
trado por conteo directo a los 60, 80,
100 y 150 días.
A los 80, 100, 120 y 150 días
de plantados los esquejes se midió la
Longitud y ancho de las hoja regis-
trando los valores de la tercera hoja,
contando desde el inicio del brote.
El diámetro y longitud de la
raíz se evaluó al finalizar el experi-
mento a los 150 días de plantado, se
escogió una planta de cada unidad
experimental y se la extrajo para poder
realizar la medición de la longitud con
una cinta métrica y el diámetro con la
ayuda de un calibrador.
A los 150 días también se
evaluó el vigor de la planta: parámetro
que aplica la escala propuesta por el
investigador en la tabla 1.
100, 120 and 150 days.
At 80, 100, 120 and 150 days,
the length and width of leaves were
measured and the values of the third
leaf documented, counting from the
start of the bud.
The diameter and length of the
root was evaluated to finalize the
experiment at 150 days. One plant
was chosen from each unit and extrac-
ted to measure the length with a mea-
suring tape and the diameter with a
caliper.
Also at 150 days, plant vigor
was evaluated according to the para-
meters in Table 1.